SCHEDE TECNICHE

SPECIE FUNGINE

Aleuria aurantia (Pers.) Fuckel
Arcyria cinerea (Bull.) Pers., Syn. meth. fung. (Gottingen) 1: 184 (1801)
Chlorociboria aeruginosa (Oeder) Seaver ex C.S. Ramamurthi, Korf & L.R. Batra, Mycologia 49(6): 859 (1958) [1957]
Conocybe fuscimarginata (Murrill) Singer, Beih. Nova Hedwigia 29: 210 (1969)
Floccularia luteovirens (Alb. & Schwein.) Pouzar, Ceska Mykol. 11: 50 (1957)
Lactarius volemus (Fr.) Fr., Epicr. syst. mycol. (Upsaliae): 344 (1838) [1836-1838]
Lasiosphaeria lanuginosa (P. Crouan & H. Crouan) A.N. Mill. & Huhndorf, Mycol. Res. 108(1): 31 (2004)
Phallus impudicus L., Sp. pl. 2: 1178 (1753)
Phellinus igniarius (L.) Quel., Enchir. fung. (Paris): 177 (1886)
Phloeomana hiemalis (Osbeck) Redhead, Index Fungorum 289: 1 (2016)
Phloeomana minutula (Sacc.) Redhead, Index Fungorum 290: 1 (2016)
Scleroderma bovista Fr., Syst. mycol. (Lundae) 3(1): 48 (1829)
Arrhenia spathulata (Fr.) Redhead, Can. J. Bot. 62(5): 876 (1984)
Botryobasidium aureum Parmasto, Eesti NSV Tead. Akad. Toim., Biol. seer 14(2): 220 (1965)
Cheilymenia stercorea (Pers. : Fr.) Boud.  f. stercorea
Ciboria  batschiana (Zopf) N. F. Buchw  
Coprinellus angulatus (Peck) Redhead, Vilgalys & Moncalvo
Crucibulum laeve (Huds.) Kambly, Gast. Iowa: 167 (1936)
Cyathus stercoreus (Schwein.) De Toni, in Berlese, De Toni & Fischer, Syll. fung. (Abellini) 7: 40 (1888)
Flammulina ononidis Arnolds, Westfälische Pilzbriefe 11(3-4): 33 (1977)
Hymenoscyphus serotinus (Pers.) W. Phillips, Man. Brit. Discomyc. (London): 125 (1887)
Hypomyces chrysospermus Tul. & C. Tul., Annls Sci. Nat., Bot., sér. 4 13: 16 (1860)
Lacrymaria lacrymabunda (Bull.) Pat., Hyménomyc. Eur. (Paris): 123 (1887)
Lycogala terrestre Fr., in Fries & Nordholm, Symb. gasteromyc. (Lund) 1: 10 (1817)
Lycoperdon utriforme Bull., Hist. Champ. Fr. (Paris): 153 (1791)
Psilocybe subcoprophila (Britz.) Sacc.
Rhizopus stolonifer (Ehrenb.) Vuill., Revue mycol., Toulouse 24: 54 (1902)
Sarcoscypha coccinea (Gray) Boud., Bull. Soc. mycol. Fr. 1: 103 (1885)
Schizophyllum commune Fr. [as Schizophyllus communis], Observ. mycol. (Havniae) 1: 103 (1815)
Stemonitis fusca Roth 1787
Stictis radiata (L.) Pers., Observ. mycol. (Lipsiae) 2: 73 (1800) [1799]
Trichoderma viride Pers., Neues Mag. Bot. 1: 92 (1794)
Tubaria furfuracea (Pers.) Gillet, Hyménomycètes (Alençon): 537 (1876) [1878]
Verpa bohemica (Krombh.) J. Schröt.,


NOME VIGENTE:

Phloeomana hiemalis (Osbeck) Redhead, Index Fungorum 289: 1 (2016)

SINONIMI:

Agaricus epiphloeus Fr., Hymenomyc. eur. (Upsaliae): 146 (1874)
Agaricus hiemalis Osbeck, Göteb. Wet. o Witt. Samk. Handl. Afd., styck. 4: 34 (1788)
Hemimycena hiemalis (Osbeck) Singer, Revue Mycol., Paris 3(6): 195 (1938)
Marasmiellus hiemalis (Osbeck) Singer, Lilloa 22: 302 (1951) [1949]
Mycena epiphloea (Fr.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 5: 286 (1887)
Mycena epiphloea (Fr.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 5: 282 (1887) var. epiphloea
Mycena hiemalis (Osbeck) Quél., Mém. Soc. Émul. Montbéliard, Sér. 2 5: 110 (1872)
Mycena hiemalis (Osbeck) Quél., Mém. Soc. Émul. Montbéliard, Sér. 2 5: 110 (1872) f. hiemalis
Mycena hiemalis f. radicata Kühner, Encyclop. Mycol. 10: 576 (1938)
Mycena hiemalis f. terrestris Kühner
* Tratto da Index Fungorum


Ordine:

Agaricales

Famiglia:

Porotheleaceae

Genere:

Phloemana

Specie:

P. hiemalis  (Nomenclatura Binomiale: Phloeomana hiemalis)

Descrizione morfobotanica

Cappello:

conico-campanulato, poi convesso, man mano che va avanti il processo di maturazione; il centro si presenta umbonato. La superficie della cuticola è liscia, striata per trasparenza. Le tonalità cromatiche vanno dal bianco al bianco-crema, al bruno-grigio. Il colore del disco è crema con tonalità +/-cariche, fino ad arrivare al bruniccio. Il bordo esterno è ialino.


Lamelle:

convesse, ventricose, ascendenti, con presenza di lamellule, adnate per un dentino, spaziate, aventi un colore bianco-grigio, ed orlo biancastro. [J. BREITENBACH /F. KRÄNZLIN, 1991: 276].

Gambo:

cilindrico, arcuato, traslucido, con presenza evidente di pruina biancastra e fibrille innate del medesimo colore.

Carne:

inodore, esigua.

Microscopia

Spore:

ialine, a reazione amiloide (J-) [J. BREITENBACH /F. KRÄNZLIN, 1991: 276], di forma ellittica, globose quando il fungo è allo stadio iniziale di crescita, con  presenza di guttule. L’intervallo di dimensione sporale trovato è 7,9-8,4 x 5,3-5,8 µm; Coefficiente sporale Q = 1,3-1,5. Sporata bianco-crema.


Basidi:

bisporici, claviformi, aventi misura 23-27 x 6,9-8 µm

Pleurocistidi:

non osservati.

Cheilocistidi:

presenti sotto svariate forme da lageniformi a ventricoso utriformi, clavati, con la porzione superiore arrotondata, e misure di: 31-48 x 12-19 µm

Pileipellis:

costituita da ife parallele, larghe 4,7-8,5 µm, con presenza di escrescenze digitaliformi.
Ife della trama del cappello da cilindriche a globose-allungate, larghe 12-20 µm. Strato sottoimeniale costituito da ife subglobose isodiametriche larghe 3-4,5 µm. [ROBICH 2003: 366]. 

Giunti a fibbia:

non osservati, e tuttavia non presenti nelle specie con basidi bisporici. [ROBICH 2003: 366]. * La forma bisporica è priva di giunti a bibbia [Malençon & Bertault 1975:285]


Caulocistidi:

flessuosi, con grosse sporgenze, la cui misura riscontrata è 30-68 x 5-9 µm.
Ife del piede di tipo cilindrico, quelle interne debolmente pseudoamiloidi, larghe fino a 24 µm; le esterne sono gialle in Melzer, debolmente metacromatiche, larghe 2-5 µm, lisce o con isolate escrescenze. [ROBICH 2003: 366].


Habitat:

a crescita gregaria, in autunno inoltrato su cortecce di latifoglie e aghifoglie, in presenza di muschio. Ritrovato su corteccia vivente di Populus nigra, in data 21.11.2014.



Luogo di raccolta:

Bazzano (l’Aquila).


Strumentazione Usata:

Osservazione microscopica attuata in luce trasmessa, con il Sistema di Acquisizione delle Immagini (Leica). Foto macro eseguite con macchina fotografica Nikon D 5000; obiettivo Nikon AF-S Micro Nikkor 105 mm.

Techiche analitiche usate:

Osservazione microscopica attuata su materiale fresco, utilizzando acqua; Rosso Congo ammoniacale al 6% per porre in risalto le varie strutture; il reattivo di Melzer anionico, per evidenziare la reazione amiloide.

Bibliografia:

J. Breitenbach/F.Kränzlin 1991 “Champignons De Suisse - Tome 3”-  Mykologia Luzern pag.276 tav.341
G. Robich 2003 “Mycena D’Europa”  A.M.B.- Centro Studi Micologici  pag.366
Courtecuisse R. & B. Duhem 1994 “Guide de Champignons de France et d’Europe” delachaux et niestlé p.231 fig. 609
Malençon G. & Bertault R. 1975 “Flore des Champignons Superieurs du Maroc”. II, pag. 284.
Index Fungorum:http://www.indexfungorum.names/names.asp





* La nomenclatura vigente, segue le abbreviazioni dei nomi degli autori dei Taxa Fungini Secondo CABI (Bioscience 2003) Nomi correnti delle specie tratti da "Storia della micologia italiana e primo contributo alla nomenclatura corretta dei funghi" - ISPRA - A.M.B. C.s.m. (Centro Studi Micologici) - manuali e linee guida 104/2013


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